抗原修复方法

[2013/9/9]

  尽管固定对于组织形态的保留是必不可少的,但这一过程对IHC/ICC检测也有不良影响。固定可能会改变蛋白的生化特性,如目的表位被掩盖,或不再与一抗结合。表位的掩盖可能是由氨基酸与表位的交联、表位附近无关肽段的交联、表位构象的改变或抗原静电荷的改变引起的。抗原修复指的是逆转表位掩盖和恢复表位-抗体结合的技术。

  抗原修复技术

  抗原修复的需要取决于多个变量,包括但不限于,目的抗原、所使用的抗体、组织类型,以及固定方法和持续时间。多克隆抗体能识别多个表位,因此即使不进行抗原修复,它们也比单克隆抗体更有可能检测到特定抗原。

  目前有多种技术可恢复表位的免疫反应性。简单的方法有改变抗体稀释液的pH或阳离子浓度,这可能影响抗体与表位的亲和力。对于部分掩盖的表位,在开始抗原修复之前可以先试试改变一抗的孵育条件。不过,这一步也需要抗体浓度、孵育时间和温度的进一步优化。在讨论抗体修复方法时,技术通常分为两大类,蛋白酶诱导的表位修复(PIER)和热诱导的表位修复(HIER)。一旦优化好,抗原修复的影响可能是明显的。

  蛋白酶诱导的表位修复(PIER)

  在PIER方法中,蛋白酶K、胰蛋白酶和胃蛋白酶等都曾成功恢复抗体与表位的结合。人们认为作用机制是切割了可能遮盖表位的肽段。PIER的缺点在于恢复免疫反应性的成功率低,且有可能破坏组织形态和目的抗原。

  热诱导的表位修复(HIER)

  HIER被认为能逆转一些交联,并实现表位二级或三级结构的重建。每种组织、固定方法和待研究抗原的实验方案必须经过优化。总的来说,HIER的成功率比PIER要高得多。HIER可利用微波炉、高压锅、蒸屉、高压灭菌锅或水浴开展。在HIER实验中,微波炉是越来越流行的设备。这些方案大多加热5分钟,然后更换缓冲液。对于所有HIER方法,在开始IHC/ICC孵育之前必须让玻片冷却。HIER对时间、温度、缓冲液和pH特别敏感,最佳方法必须根据经验确定。

  优化与限制

  抗原修复可能需要加强样品与玻片或盖玻片的附着。此外,此技术对于冰冻组织切片和酒精固定切片通常过于剧烈。对于每种设备,时间、温度和pH必须经过优化(如92-95 °C水浴中的5-10分钟,相对120 °C高压锅中的1-5分钟)。为了优化抗原修复,必须开展初步研究,使用时间、温度和pH的各种组合。在使用抗原修复方法时,应始终考虑到染色假象的可能性。实验应当包含对照,以证明特异的抗体结合,因为染色常受到实验中多个变量的影响。